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Por que usamos uma autoclave a 121 ° C (250F)? (Origem)

Por que usamos uma autoclave a 121 ° C (250F)? (Origem)



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Deixe-me começar dizendo que sei por quê, mas estou perguntando mais sobre a origem.

Minha pergunta é mais relacionada à literatura que não consigo encontrar. Encontrei alguns papéis e informações úteis sobre a origem do uso de 121 ° C para esterilizar equipamentos e matar bactérias, mas queria fazer a pergunta de qualquer maneira e ver se alguém sabia algo mais sobre isso.

Então, para reafirmar minha pergunta, eu quero ver os dados do porquê 121 ° C e não 120 ° C?

Originalmente, pensei que fosse porque os experimentos podem ter sido conduzidos em F e a inter-conversão de F para C rendeu 121 ° C, que é um número ímpar.

Pelo que pude constatar, começou na indústria de alimentos com uma empresa que fabricava produtos enlatados e seus produtos enlatados estavam explodindo. Esta empresa abordou o MIT e, após algumas pesquisas, eles descobriram que a 121 ° C (250F) por 60 min em retorta mataria os esporos que sobreviveram ao processamento anterior. (mais exp. reduziu o tempo para 10 min, para amêijoas enlatadas)

Isso está detalhado no artigo publicado em 1897

https://www.jstor.org/stable/1623441?seq=1#metadata_info_tab_contents

A autoclave foi inventada em 1879 (18 anos antes da publicação). No final da publicação diz:

Descrições detalhadas dos organismos e de muitos outros experimentos serão fornecidas em nosso artigo completo sobre este assunto para aparecer em um próximo número do Technology Quarterly

Não consegui encontrar este problema específico de Technology Quarterly

Os autores (S. C. Prescott e W. Lyman Underwood) também dizem:

Como mostramos em nosso artigo anterior, para garantir a esterilização na prática, é necessário obter e manter uma temperatura superior a 121 ° C (212F) em todo o conteúdo da lata. A esterilização intermitente pode ser empregada, mas é menos eficiente e não é praticável em grande escala ou comercial. Descobrimos por experiência que sessenta minutos a 121 ° C (250F) é tempo suficiente para esterilizar milho, e parece provável que isso possa ser um pouco encurtado ou a temperatura reduzida.

Eles estão usando ° C, mas desde 1890, as retortas (autoclaves) usadas na indústria de alimentos podem ser F e os autores provavelmente converteram as leituras do equipamento da retorta em ° C para a comunidade científica.

Além disso, isso foi o pioneiro no estudo da morte térmica e se você olhar para a temperatura que eles usaram para o estudo, eles são meio esporádicos. Provavelmente porque eles queriam ver que temperatura + tempo chegariam ao centro da lata. A duração do aquecimento, ou processamento, e a pressão fornecida variam um pouco nas diferentes fábricas e isso pode ter sido o que as levou a 121 ° C e não a 120 ° C.

Outras pesquisas foram feitas neste campo: Em 1956 e 1958, F. H. Deindoerfer & A. E. Humhrey descobriram que 250F (121C) é a temperatura ideal para evitar danos ao meio nutriente. Eles também discutiram métodos analíticos para tempos de esterilização por calor.

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1057515/

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1057690/

O que estou procurando especificamente é o primeiro estudo de morte térmica com valores D&Z que levou ao uso generalizado de 121 ° C. Andy, por que o tempo e psi necessários para esterilizar as amostras biológicas. Eu conheço e encontrei documentos sobre o que é usado para validar Autoclaves.

Geobacillus sterothermophilus (conhecido como Bacillus sterothermophilus também) é utilizado para validar autoclaves e isso se deve ao fato de ser muito resistente ao calor, sendo um bom indicador biológico de vida microbiana pós-esterilização. O único artigo que encontrei que tinha alguns dados gráficos sobre sua taxa de morte térmica usa ° C em vez de F. Não consigo encontrar qualquer informação sobre a redução Log bacteriana a 120 ° C comparando-a com 121 ° C. Essa resposta pode muito bem ser uma equação matemática que leva a essa temperatura, mas esse é o único ponto que não explorei

Papel em Geobacillus sterothermophilus: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1057891/

Se alguém puder encontrar isso Technology Quarterly papel que mencionei no início que seria ótimo.


A razão para 121 ° C e não 120 ° C é devido ao modo como as autoclaves funcionam e como foram desenvolvidas. Eles esterilizam com vapor saturado sob pressão. Historicamente, medimos a pressão gerada pelo vapor. O que leva diretamente à resposta.

A energia a vapor era a base do processo industrial no século 19 e para usá-la com segurança era necessário monitorar e controlar a pressão da caldeira. Explosões de caldeiras não eram incomuns nos primeiros dias da energia a vapor. O medidor de pressão Bourdon foi inventado em 1849 e era uma tecnologia robusta que produzia medições confiáveis ​​e precisas da pressão do vapor.

https://journals.sagepub.com/doi/pdf/10.1177/002029408702000803

Quando Chamberland inventou a autoclave em 1879 da panela de pressão anterior de Papain, ela dependia exclusivamente da medição da pressão para o controle. Só em 1933 foram produzidas autoclaves que monitoravam a temperatura na linha de drenagem para confirmar se o ar estava exaurido e o vapor realmente saturado. https://www.steris.com/healthcare/knowledge-center/sterile-processing/everything-about-autoclaves

O estudo das máquinas a vapor foi a base para o desenvolvimento da termodinâmica e da teoria molecular cinética dos gases. Embora o vapor esteja longe de ser um gás ideal, existe uma relação previsível entre temperatura e pressão no vapor saturado, bem como propriedades bem estabelecidas de transferência de calor. Eles podem ser encontrados nas tabelas de vapor de engenharia padrão.

Exemplos: https://www.engineersedge.com/thermodynamics/steam_tables.htm

O vapor saturado é muito eficiente na transferência de calor. É por isso que as queimaduras são tão graves em comparação com as queimaduras simples nas mesmas temperaturas. É também como o vapor saturado mata até microorganismos resistentes ao calor em uma autoclave. https://learnaboutgmp.com/good-manufacturing-practices-cgmp/saturated-steam-efficient-sterilization/

Uma atmosfera terrestre de pressão ao nível do mar é definida como 14,69 libras por polegada quadrada (psi), embora na realidade varie um pouco devido à temperatura e ao clima. Por causa dessa variação e porque os humanos usam algarismos arábicos, aritmética e álgebra como unidades inteiras em 5; os engenheiros costumam pensar em 1 atmosfera de pressão como 15 psi. Essa quantidade de pressão de vapor saturado está bem dentro das capacidades de caldeiras a vapor típicas. Esta bela rodada de vapor saturado de 15 psi matará até mesmo endosporos bacterianos altamente resistentes em cerca de 15 minutos. Um intervalo de tempo muito razoável e um bom mnemônico: 15 psi por 15 minutos.

A temperatura daqueles 15 psi de vapor saturado? 121 ° C.

E é por isso que usamos 121 ° C muito incomum para autoclavagem típica. É porque, na verdade, estamos usando uma atmosfera terrestre arredondada de pressão de vapor. E fizemos isso sem nos preocuparmos com a medição direta da temperatura durante os primeiros 50 anos de uso da autoclave. Em muitos aspectos, a temperatura da autoclave era de importância secundária.


Procedimentos de esterilização para aloenxertos de tecido

Resumo:

A esterilização terminal de embalagens lacradas contendo produtos de saúde, biomateriais e aloenxertos de tecido pode ser o método de esterilização de escolha, particularmente para itens caros e de baixo volume de produção, como produtos para dispositivos medicamentosos e biomateriais, como osso, pele, tendão e outras matérias moles usadas por bancos de tecidos. A validação da esterilidade para níveis de garantia de esterilidade de 1:10 6 é baseada em uma abordagem estatística e pode complementar ou substituir outros métodos, como o uso de controle asséptico do ambiente de produção. Este capítulo analisa o estado atual dos protocolos de esterilização por radiação ionizante e suas aplicações em uma ampla gama de produtos de saúde e biomateriais.


O que é Autoclave (Esterilização por Steam)?

A esterilização é a destruição de todas as formas de vida microbiana, conforme verificado pela demonstração da morte de esporos bacterianos altamente resistentes. É o nível mais alto de morte microbiana. A esterilização por vapor ou autoclavagem é um dos métodos mais comuns e amplamente utilizados para esterilização em consultórios odontológicos. O processo se refere a um processo de esterilização de instrumentos que usa tempo, temperatura e pressão para matar todas as formas de vida microbiana, incluindo esporos. Uma autoclave é uma câmara de pressão, tipo de vaso que usa vapor de alta pressão para esterilizar equipamentos e suprimentos. Acredita-se que este seja um dos métodos mais eficientes de esterilização, destruindo todos os microrganismos, patogênicos e não patogênicos, incluindo esporos e vírus. A autoclavagem requer um mínimo de 121 graus Celsius (250 graus Fahrenheit) com pressão de vapor de 15 libras por polegada quadrada (psi), por 15 minutos para garantir a esterilização.


Preparação do Ágar MacConkey

  1. Pesar e suspender 50 gramas de pó de ágar MacConkey (consulte as instruções do fabricante) em 1 litro de água purificada e misture bem.
  2. Aquecer com agitação frequente e ferver durante 1 minuto para dissolver completamente o pó. A 121 ° C durante 15 minutos.
  3. Resfrie a 45-50 ° C, misture bem e despeje cerca de 20-25ml em placas de Petri estéreis e deixe solidificar.
  4. Após a solidificação das placas, rotule as placas de mídia com o nome e a data de preparação (na parte de trás da mídia, pois as tampas podem ser trocadas)
  5. Armazene invertido (com as tampas para baixo) a 2-8 ° C até o uso.

Você também pode comprar o ágar MacConkey pronto de fornecedores comerciais.


Earle H Spaulding (1968) Médico Americano

  • Propôs que como um objeto será desinfetado ou esterilizado depende do uso pretendido do objeto.
  • Sistema de classificação Spaulding & # 8217s:
    • CRÍTICO & # 8211 objetos que entram em tecido normalmente estéril ou no sistema vascular ou através dos quais o sangue flui deve ser estéril.
    • SEMICRÍTICO & # 8211 objetos que tocam membranas mucosas ou pele que não está intacta requerem um processo de desinfecção (desinfecção de alto nível [DAN]) que mata todos os microorganismos, mas um grande número de esporos bacterianos.
    • NÃO CRÍTICO -objetos que tocam apenas a pele intacta requerem desinfecção de baixo nível.

    Em 1989, um ozônio esterilizador para aplicações de cuidados de saúde, desenvolvido pela Life Support, Inc., Erie, Pensilvânia, foi liberado para comercialização pelo FDA.

    Também em 1989, Steris System 1 *, um sistema de ácido peracético de baixa temperatura para dispositivos endoscópicos entra no mercado dos EUA. * Em maio de 2008, t O FDA rejeitou o Steris System 1, e Steris teve que retirá-lo do mercado.

    Também em 1989, o STATIM a autoclave a vapor de alta velocidade também foi introduzida nos EUA pela SciCan, Inc., Toronto, Ontario.

    Em 1993, o FDA aprova o Sterrad Sterilizer, um sistema de esterilização de plasma, para uso nos EUA.


    Conteúdo

    Os grandes cilindros graduados são geralmente feitos de polipropileno por sua excelente resistência química ou de polimetilpenteno por sua transparência, tornando-os mais leves e menos frágeis que o vidro. O polipropileno (PP) é fácil de autoclave repetidamente, no entanto, autoclavar em excesso de cerca de 121 ° C (250 ° F) (dependendo da formulação química: polipropileno de grau comercial típico funde em excesso de 177 ° C (351 ° F)), pode entortar ou danificar os cilindros graduados de polipropileno, afetando a precisão. [1]

    Um cilindro graduado tradicional é geralmente estreito e alto para aumentar a exatidão e a precisão da medição do volume. Tem uma base de plástico ou vidro (pedestal, pé, suporte) e uma "bica" para facilitar o despejo do líquido medido. Uma versão adicional é ampla e baixa.

    Os cilindros de mistura têm juntas de vidro esmerilado em vez de um bico, de modo que podem ser fechados com uma rolha ou se conectar diretamente a outros elementos de um manifold. [2] Com esse tipo de cilindro, o líquido medido não é derramado diretamente, mas geralmente é removido com uma cânula. Um cilindro graduado deve ser lido com a superfície do líquido ao nível dos olhos, onde o centro do menisco mostra a linha de medição. As capacidades típicas de cilindros graduados são de 10 mL a 1000 mL.

    Cilindros graduados são freqüentemente usados ​​para medir o volume de um líquido. Cilindros graduados são geralmente mais precisos e precisos do que frascos e béqueres de laboratório, mas eles não devem ser usados ​​para realizar análises volumétricas [3]. preciso. Cilindros graduados às vezes são usados ​​para medir o volume de um sólido indiretamente, medindo o deslocamento de um líquido.

    Para precisão, o volume em cilindros graduados é representado em escalas com 3 dígitos significativos: os cilindros de 100 mL têm divisões de graduação de 1ml, enquanto os cilindros de 10 mL têm divisões de classificação de 0,1 mL.

    Existem duas classes de precisão para cilindros graduados. A classe A tem o dobro da precisão da classe B. [4] Os cilindros podem ter escalas simples ou duplas. Escalas simples permitem a leitura do volume de cima para baixo (volume de enchimento), enquanto os cilindros de escala dupla permitem a leitura para enchimento e vazamento (escala reversa).

    Os cilindros graduados são calibrados "para conter" (volume de líquido indicado dentro do cilindro) e marcados como "TC" ou "para fornecer" (volume de líquido indicado derramado, contabilizando traços de líquido deixados no cilindro) e marcados como "TD". [5] Anteriormente, as tolerâncias para cilindros "para entregar" e "conter" são distintas, mas agora são as mesmas. Além disso, os símbolos internacionais “IN” e “EX” são mais prováveis ​​de serem usados ​​em vez de “TC” e “TD”, respectivamente. [6]

    Para ler o volume com precisão, a observação deve ser ao nível dos olhos e lida na parte inferior de um menisco do nível do líquido. [7] A principal razão pela qual a leitura do volume é feita via menisco é devido à natureza do líquido em um espaço fechado. Por natureza, o líquido no cilindro seria atraído para a parede ao seu redor por meio de forças moleculares. Isso força a superfície do líquido a desenvolver uma forma convexa ou côncava, dependendo do tipo de líquido no cilindro. Ler o líquido na parte inferior de um côncavo ou na parte superior do líquido convexo é equivalente a ler o líquido em seu menisco. [8] Na imagem, o nível do líquido será lido na parte inferior do menisco, que é o côncavo. A leitura mais precisa que pode ser feita aqui é reduzida para 1 mL devido aos meios de medição fornecidos no cilindro. Disto, o erro derivado seria um décimo do menor algarismo. Por exemplo, se a leitura for feita e o valor calculado for definido como 36,5 mL. O erro, mais ou menos 0,1 mL, deve ser incluído também. Portanto, o valor mais preciso equivale a 36,5 ± < displaystyle pm> 0,1 36,4 ou 36,6 mL. Portanto, existem 3 algarismos significativos que podem ser lidos na imagem do cilindro graduado fornecida. [9] Outro exemplo, se a leitura for feita e o valor calculado for definido como 40,0 mL. O valor preciso seria 40,0 ± < displaystyle pm> 0,1 40,1 ou 39,9 mL. [10]

    Dois cilindros graduados. Um cilindro graduado tradicional (A na imagem) e cilindros de mistura (B na imagem)


    Inoculando placas de ágar e selando-as

    Enviado pela equipe do Science ASSIST em Quarta, 03/06/2015 22:14

    As questões de segurança são uma consideração significativa em microbiologia, pois há um potencial para riscos infecciosos. É a estrita observância dos procedimentos corretos, que possibilita aos alunos e funcionários trabalharem com segurança com os microrganismos. Ao trabalhar com microrganismos, é melhor tratá-los todos como patógenos potenciais (1).

    Atualmente na Austrália, algumas atividades microbiológicas são permitidas em algumas jurisdições e não em outras. Portanto, você deve verificar as atividades permitidas em sua jurisdição antes de prosseguir. O Science ASSIST está em processo de consultoria às autoridades para fazer recomendações sensatas e viáveis ​​nacionalmente consistentes para as melhores práticas em microbiologia escolar.

    É importante estar ciente dos possíveis perigos e riscos antes trabalhando com microrganismos. Portanto, a Science ASSIST recomenda que uma avaliação de risco seja realizada e medidas de controle apropriadas sejam postas em prática. A Science ASSIST desenvolveu um modelo de avaliação de risco de uma página para ajudar com isso (consulte Modelo de avaliação de risco).

    Técnicas de inoculação comumente usadas em escolas:

    O link a seguir contém boas informações gerais sobre microbiologia prática, incluindo procedimentos detalhados para as seguintes técnicas de inoculação.

    Os microrganismos podem ser inoculados em placas de ágar em laboratórios de ciências escolares por vários métodos.

    1) Inoculação de placas por exposição ao ar (placas de assentamento):

    As placas de Petri são deixadas abertas ao ar em vários locais do laboratório por um período de tempo antes de as tampas serem recolocadas, seladas com 4 pedaços de fita adesiva e incubadas. As placas não devem ser deixadas abertas em áreas como banheiros.

    2) Inoculação por contato direto.

    Os microrganismos são transferidos diretamente para uma placa de ágar tocando a superfície do ágar com um item como uma moeda. Tocar o ágar com a ponta do dedo não é recomendado, pois isso pode permitir o crescimento de patógenos.

    3) Inoculação de placas com zaragatoas estéreis de amostras ambientais:

    Um cotonete esterilizado é umedecido em caldo esterilizado ou água e esfregado sobre a área a ser amostrada. O esfregaço é então movido sobre a superfície da placa de ágar em zigue-zague (2) para transferir quaisquer microrganismos. O cotonete pode ser descartado no lixo, pois não foi usado para esfregar áreas que contenham quaisquer patógenos. Como precaução adicional, a zaragatoa pode ser colocada numa solução desinfectante preparada recentemente, como hipoclorito de sódio a 0,25%, durante 2 horas antes de ser eliminada no lixo.

    4) Inoculação de placas com loops bacteriológicos de amostras de alimentos, como iogurte ou queijo:

    Uma alça esterilizada por calor pode ser usada para amostrar uma amostra de iogurte ou queijo. A alça é usada para espalhar a amostra em zigue-zague sobre a superfície do ágar, conforme descrito acima, ou colocada em uma seção da superfície de uma placa de ágar e, em seguida, riscada para colônias únicas, conforme descrito abaixo.

    Observação: As culturas acima são consideradas "culturas selvagens" e devem não ser aberto ou subcultura. As placas de ágar devem ser esterilizadas antes do descarte. Quando as observações forem concluídas, as placas devem ser descontaminadas por esterilização em autoclave ou panela de pressão antes de serem descartadas na lixeira. As placas de ágar devem ser colocadas em um saco autoclavável, como um saco de forno, para esterilização a 110 kPa / 15psi, 121 ° C por 15-20 minutos em uma autoclave ou panela de pressão antes do descarte.

    Lembre-se de marcar a base da placa ao redor da borda (3) em vez de no meio, onde qualquer tumor pode ser obscurecido, e incube a placa de cabeça para baixo para evitar que qualquer condensação que se forma na tampa goteje no ágar afetando as colônias crescendo na superfície.

    Selagem de placas de ágar:

    O selamento completo das placas de Petri durante a incubação deve ser evitado, pois isso pode gerar um ambiente anaeróbio inibindo o crescimento de microrganismos aeróbios e promovendo o crescimento de patógenos potencialmente anaeróbicos (ver abaixo para mais informações). A Science ASSIST recomenda que a tampa e a base da placa de Petri sejam cobertas com 4 pedaços de fita adesiva (2, 3) para permitir condições aeróbicas e para evitar a abertura acidental da placa durante a incubação. As placas podem ser seladas com fita adesiva ou, de preferência, Parafilme, completamente em torno de sua circunferência antes de permitir que os alunos as examinem. Isso evitará qualquer exposição à umidade ou gotejamentos que possam vazar da placa de Petri, que são fontes potenciais de infecção, além de manter a tampa firmemente presa à base. Todas as observações devem ocorrer com a placa de Petri gravada. Parafilm é um filme de vedação de laboratório com propriedades únicas. É um filme ceroso e elástico, muito bom para moldar em torno de tubos de ensaio, garrafas, frascos e em torno de placas de Petri para fornecer uma vedação à prova de vazamentos. É muito mais eficaz do que fita adesiva.

    Informações básicas essenciais:

    Os laboratórios de ciências escolares são classificados como (PC1) Contenção Física nível 1, se cumprirem os requisitos de AS / NSZ 2243.3-2010. Segurança em laboratórios. Parte 3. Segurança e contenção da microbiologia. Os laboratórios PC1 são adequados para trabalhar com microrganismos do grupo de risco 1 . Estes são microrganismos infecciosos que são “improvável que cause doenças em humanos, plantas ou animais" e "onde o pessoal do laboratório pode ser adequadamente protegido pelas práticas de laboratório padrão” (4) .

    Microrganismos anaeróbios:

    O crescimento de microrganismos anaeróbios, aqueles que não podem ser cultivados na presença de oxigênio, deve ser evitado em laboratórios escolares. Os anaeróbios são amplamente distribuídos na natureza e são potencialmente patogênicos (capazes de causar doenças) quando removidos de seus ambientes normais (5). A maioria dos anaeróbios se enquadra nos microrganismos do Grupo de Risco 2 ou 3 que não devem ser manipulados em laboratórios PC1 e estão associados a muitas doenças, por exemplo, infecções dentárias, abcessos, pneumonia e apendicite. É importante que os procedimentos e técnicas usados ​​ao lidar com micróbios no laboratório da escola não produzam condições anaeróbias que possam selecionar o crescimento de organismos anaeróbicos patogênicos.

    Procedimentos para prevenir o crescimento de patógenos:

    Além de não vedar completamente as placas de ágar durante a incubação, existem outros procedimentos que devem ser realizados em laboratórios escolares para prevenir o crescimento de organismos patogênicos.

    • Ao manusear microrganismos, é importante usar sempre técnicas assépticas. Um risco significativo associado à microbiologia é a geração de aerossóis microbianos, onde gotículas finas de água contendo células e / ou esporos são liberadas no ar.
    • A técnica asséptica é uma habilidade fundamental em microbiologia:
      • para evitar a contaminação dos meios de cultura com micróbios indesejados,
      • para evitar a contaminação do pessoal e das superfícies de trabalho, e
      • para evitar que micróbios sejam acidentalmente lançados no meio ambiente.
      • Ágar nutriente é um meio simples que suporta o crescimento de uma ampla variedade de bactérias e fungos e é adequado para uso em laboratórios escolares.
      • Mídia projetada para selecionar microorganismos e patógenos mais exigentes, como Blood e MacConkey Agar não deveria ser usado.

      Precauções ao inocular placas de ágar.

      • Lave as mãos com água e sabão antes e depois de trabalhar com microorganismos.
      • Cubra quaisquer cortes com um curativo à prova d'água e considere o uso de luvas descartáveis.
      • Certifique-se de que as superfícies de trabalho sejam descontaminadas antes e depois de trabalhar com microorganismos com etanol 70%.
      • Certifique-se de que os instrumentos de inoculação (laços, zaragatoas, pipetas e espalhadores) sejam esterilizados antes e depois do uso.
      • Certifique-se de que os instrumentos de inoculação contendo amostras microbiológicas não podem tocar em nenhuma superfície além do ágar que requer inoculação.
      • Flameje a boca de todos os tubos de ensaio e garrafas quando a tampa for removida e antes de ser recolocada.
      • As placas devem ser abertas por um período mínimo de tempo para minimizar o risco de introdução de quaisquer contaminantes do ar.
      • A inoculação deve ser realizada o mais rápido possível para minimizar a introdução de quaisquer contaminantes.
      • Trabalhe próximo à chama de Bunsen, pois ela fornece uma corrente ascendente que carrega o ar para fora da área de trabalho, reduzindo assim a contaminação do ar.
      • Tenha disponível um kit de derramamento de bactérias (preparado de fresco com hipoclorito de sódio 1%, balde, esfregona, sacos plásticos de lixo, toalha de papel, luvas descartáveis, óculos de segurança, máscara, avental plástico descartável).

      Subcultura:

      O Science ASSIST está atualmente buscando aconselhamento sobre as seguintes atividades nas escolas. Atualmente, eles são permitidos em algumas jurisdições e não em outras. Os professores que supervisionam os alunos que realizam essas atividades devem ter formação microbiológica.

      1. Método Streak-plate:

      O princípio deste método é a diluição gradual de um inóculo de bactérias sobre a superfície de uma placa de ágar para produzir colônias puras isoladas. Uma pequena quantidade de amostra é colocada em uma seção da superfície de uma placa de ágar com um cotonete estéril ou uma alça de inoculação inflamada. Isso é chamado de inóculo inicial. A alça é esterilizada e usada para espalhar o inóculo inicial em uma direção para fazer várias estrias. Isso é conhecido como o primeiro conjunto de listras. A alça é esterilizada novamente por flama e o processo de estrias é repetido mais 2–3 vezes, cada vez voltando para o conjunto anterior de estrias. Após a incubação, colônias únicas devem ser vistas no conjunto final de estrias. Cada colônia é produzida a partir de uma única célula bacteriana à medida que se multiplica.

      2. Inoculação de placas com pipetas e espalhadores de vidro para produzir placas de gramado:

      Pipetas graduadas ou Pasteur com tampão de algodão esterilizado podem ser usadas para liberar 2-3 gotas de bactérias de culturas de caldo de nutrientes na superfície de uma placa de ágar. Um espalhador de vidro estéril é então usado para espalhar as gotas uniformemente sobre a superfície do ágar. Esta técnica é usada para preparar um gramado ou cultura de propagação, onde toda a superfície da placa é uniformemente coberta por bactérias. É comumente usado para testar substâncias antimicrobianas, como antibióticos e desinfetantes, ou para realizar contagens de colônias. A pipeta e o espalhador devem ser descontaminados em autoclave ou colocados em uma solução desinfetante imediatamente após o uso e antes da limpeza.

      Microorganismos que não requerem oxigênio para crescer. O oxigênio não é usado para obter energia e é tóxico para esses microrganismos. Eles são freqüentemente chamados de anaeróbios estritos ou obrigatórios.

      Microrganismos anaeróbios facultativos:

      Microorganismos que crescem na ausência ou na presença de oxigênio. Eles podem metabolizar energia aerobicamente ou anaerobicamente. O oxigênio não é tóxico para esses microrganismos.

      Microrganismo capaz de causar doenças.

      A transferência asséptica de um microrganismo de uma placa de ágar para outra placa de ágar fresco para permitir que ele cresça continuamente.

      (2) 'Diretrizes para as melhores práticas de microbiologia nas escolas australianas'. Site do Science ASSIST, https://assist.asta.edu.au/resource/4196/guidelines-best-practice-microb. (Adicionado em outubro de 2019)

      (3) Society for General Microbiology UK. 2006. Microbiologia Prática Básica, Um Manual . Site de microbiologia online: http://www.microbiologyonline.org.uk/file/ca2189fba3b39d24c5a44c1285d008.

      (4) Padrões Austrália. 2010. AS / NZS 2243 Segurança em Laboratórios, Parte 3: 2010 Segurança microbiológica e contenção. Sydney, Austrália.

      (5) Hentges, David J. ‘Anaerobes: General Characteristics’ in Baron S, (Editor) 1996. Microbiologia Médica. 4ª edição. University of Texas Medical Branch: Galveston (TX). Site do National Center for Biotechnology Information https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK7638/

      Pacote de recursos do Departamento de Educação e Comunidades de NSW 'Segurança Química nas Escolas (CSIS)'. NSW DEC website https://education.nsw.gov.au/ DEC Intranet, login obrigatório.

      (4) Este extrato de AS / NZS 2243 Segurança em Laboratórios, Parte 3: 2010 Segurança microbiológica e contenção foi reproduzido com permissão da SAI Global Ltd sob a Licença 1407-c117

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      EXPERIMENTOS PARA MOSTRAR O CRESCIMENTO DAS BACTÉRIAS - técnicas básicas

      As bactérias crescerão em praticamente qualquer fonte de alimento orgânico que forneça carbono compostos a serem respirados para energia, e azoto compostos a serem incorporados em proteínas para crescimento. Essas substâncias são normalmente fornecidas dissolvidas em água. No entanto, na natureza, as bactérias podem quebrar substâncias sólidas e insolúveis ao liberar enzimas no substrato em que estão crescendo. Essas substâncias são, portanto, decompostas ou digeridas em substâncias mais simples e o processo é denominado digestão extracelular porque ocorre fora das células bacterianas.

      Os dois normais meios de comunicação usados ​​em bacteriologia são um líquido claro como uma sopa caldo de nutriente, geralmente em tubos, e nutriente ágar, que é transformado em uma geléia pela adição de um extrato de alga marinha chamado ágar e, quando derretido, é derramado em vidro ou plástico Placas de Petri - também conhecidas como "placas".

      Um padrão fonte de carbono é glicose, e azoto é frequentemente fornecido por peptonas (parcialmente digerido proteínas), ou sais inorgânicos. Minerais e vitaminas também podem ser fornecidos, de acordo com as necessidades de crescimento da bactéria. Combinações de produtos químicos (tampões) podem ser usadas para manter o pH estável. Quantidades medidas dos concentrados são adicionadas à água e dissolvidas para reconstituir o meio.

      Às vezes, as substâncias são misturadas na mídia, a fim de suprimir o crescimento de outros tipos de bactérias. Existem muitos desses meios seletivos.

      Técnicas microbiológicas

      Esterilização, técnicas assépticas, inoculação, incubação

      Essas mídias devem então ser esterilizado por aquecimento em uma autoclave (como uma panela de pressão) a 121 C (pressão de 1 bar ou 15 lb / pol²) por 15 minutos, o que mata todos os organismos vivos, incluindo esporos.

      Todos os aparelhos usados ​​a partir deste ponto devem ser esterilizados por calor (vidraria - 160 C por 2 horas) ou exposição à radiação.

      Técnicas assépticas deve ser usado para reduzir a probabilidade de contaminação bacteriana. Isso geralmente envolve desinfecção das áreas de trabalho, minimizando o possível acesso de bactérias do ar aos meios expostos e o uso de chamas para matar as bactérias que podem entrar nos vasos à medida que são abertos.

      As bactérias podem ser introduzidas na mídia (inoculado) por vários meios. Normalmente, as bactérias, e. de uma gota em uma alça esterilizada por calor são espalhadas na superfície do ágar (pronto). Uma técnica semelhante é usada com culturas de caldo. Às vezes, as bactérias em um líquido são introduzidas usando uma pipeta estéril na placa de Petri antes que o meio de ágar (razoavelmente frio) seja colocado no topo ("placas de despejo").

      Em seguida, as placas de Petri contendo ágar ou tubos contendo caldo são incubado, ou seja, colocado em um aparelho especial a uma temperatura fixa (geralmente 37 C - temperatura do corpo humano, para possíveis patógenos - ou 25 C para bactérias do meio ambiente). Nas escolas, temperaturas mais baixas de incubação são usadas para desencorajar o crescimento de patógenos potenciais.

      No cultivo de bactérias, é comum inverter as placas de Petri, para evitar que gotas de condensação caiam na superfície do ágar. As placas de Petri são frequentemente "seladas" neste estágio para evitar que as pessoas que as manipulam sejam contaminadas por bactérias, que se multiplicam muito. É normal usar 2 tiras de fita adesiva da base à tampa, em vez de tentar selar a borda circular da placa de Petri. Isso serve para evitar a possibilidade de crescimento de organismos anaeróbios devido à falta de ar. No entanto, deve-se ter em mente que quaisquer gotas de uma placa de Petri parcialmente selada são fontes potenciais de infecção.

      Resultados

      Meio líquido como o caldo se tornou nebuloso se as bactérias estiverem presentes. Isso pode ser o resultado de apenas uma célula bacteriana originalmente entrando no meio e depois se dividindo repetidamente para produzir milhões!


      Bactérias em "placas" de ágar tornam-se visíveis como circulares distintas colônias cada colônia deve representar uma célula bacteriana individual (ou grupo) que se dividiu repetidamente, mas, sendo mantida em um lugar, as células resultantes se acumularam para formar uma mancha visível.


      Por uma extensão deste método usando diluições em série in sterilised liquids, the number of bacteria in a given amount of sample, e.g. food, can be calculated.


      After use, bacterial cultures, etc. must be sterilised by the use of heat, before disposal.


      REAGENTS AND SOLUTIONS

      Lugol's iodine 1% (w/v)

      • Weigh 0.1 g iodine (I2) and 0.2 g potassium iodide (KI).
      • Dissolve the solids in 30 ml dH2O.
      • Store up to 1 year at room temperature

      YP maltose

      • Weigh 10 g yeast extract and 20 g bactopeptone into a 1-L bottle
      • Add 900 ml of dH2O
      • Sterilize by autoclaving for 20 min at 121°C
      • After autoclaving, add 100 ml of a 20% (w/v) maltose stock solution
      • Store up to several weeks at room temperature
      • Weigh 10 g yeast extract and 20 g bactopeptone in a 1-L bottle
      • Add 900 ml of dH2O
      • Sterilize by autoclaving for 20 min at 121°C
      • After autoclaving, add 100 ml of a 20% (w/v) d -glucose stock solution
      • Store up to several weeks at room temperature

      Zinc chloride solution

      • Prepare a stock solution of zinc chloride at 200 ppm (417 mg/L ZnCl2).
      • Sterilize by autoclaving for 20 min at 121°C
      • Store up to several at room temperature

      Conteúdo

      Aseptic technique is a key component of all invasive medical procedures. Similar control measures are also recommended in any healthcare setting to prevent the spread of infection generally. [ citação necessária ]

      Hand hygiene Edit

      Hand hygiene is one of the basic, yet most important steps in IPC (Infection Prevention and Control). Hand hygiene reduces the chances of HAI (Healthcare Associated Infections) drastically at a floor-low cost. Hand hygiene consists of either hand wash(water based) or hand rubs(alcohol based). Hand wash is a solid 7-steps according to the WHO standards, wherein hand rubs are 5-steps. [ citação necessária ]

      Independent studies by Ignaz Semmelweis in 1846 in Vienna and Oliver Wendell Holmes, Sr. in 1843 in Boston established a link between the hands of health care workers and the spread of hospital-acquired disease. [3] The U.S. Centers for Disease Control and Prevention (CDC) state that "It is well documented that the most important measure for preventing the spread of pathogens is effective handwashing". [4] In the developed world, hand washing is mandatory in most health care settings and required by many different regulators. [ citação necessária ]

      In the United States, OSHA standards [5] require that employers must provide readily accessible hand washing facilities, and must ensure that employees wash hands and any other skin with soap and water or flush mucous membranes with water as soon as feasible after contact with blood or other potentially infectious materials (OPIM). [ citação necessária ]

      In the UK healthcare professionals have adopted the 'Ayliffe Technique', based on the 6 step method developed by Graham Ayliffe, JR Babb and AH Quoraishi. [6]

      Mean percentage changes in bacterial numbers
      Method used Change in
      bacteria present
      Paper towels (2-ply 100% recycled). - 48.4%
      Paper towels (2-ply through-air dried, 50% recycled) - 76.8%
      Warm air dryer + 254.5%
      Jet air dryer + 14.9%

      Drying is an essential part of the hand hygiene process. In November 2008, a non-peer-reviewed [7] study was presented to the European Tissue Symposium by the University of Westminster, London, comparing the bacteria levels present after the use of paper towels, warm air hand dryers, and modern jet-air hand dryers. [8] Of those three methods, only paper towels reduced the total number of bacteria on hands, with "through-air dried" towels the most effective. [ citação necessária ]

      The presenters also carried out tests to establish whether there was the potential for cross-contamination of other washroom users and the washroom environment as a result of each type of drying method. They found that:

      • the jet air dryer, which blows air out of the unit at claimed speeds of 400 mph, was capable of blowing micro-organisms from the hands and the unit and potentially contaminating other washroom users and the washroom environment up to 2 metres away
      • use of a warm air hand dryer spread micro-organisms up to 0.25 metres from the dryer
      • paper towels showed no significant spread of micro-organisms.

      In 2005, in a study conducted by TUV Produkt und Umwelt, different hand drying methods were evaluated. [9] The following changes in the bacterial count after drying the hands were observed:

      Drying method Effect on bacterial count
      Paper towels and roll Decrease of 24%
      Hot-air drier Increase of 117%

      Cleaning, Disinfection, Sterilization Edit

      The field of infection prevention describes a hierarchy of removal of microorganisms from surfaces including medical equipment and instruments. Cleaning is the lowest level, accomplishing substantial removal. Disinfection involves the removal of all pathogens other than bacterial spores. Sterilization is defined as the removal or destruction of ALL microorganisms including bacterial spores. [ citação necessária ]

      Cleaning Edit

      Cleaning is the first and simplest step in preventing the spread of infection via surfaces and fomites. Cleaning reduces microbial burden by chemical deadsorption of organisms (loosening bioburden/organisms from surfaces via cleaning chemicals), simple mechanical removal (rinsing, wiping), as well as disinfection (killing of organisms by cleaning chemicals). [ citação necessária ]

      In order to reduce their chances to contract an infection, individuals are recommended to maintain a good hygiene by washing their hands after every contact with questionable areas or bodily fluids and by disposing of garbage at regular intervals to prevent germs from growing. [10]

      Disinfection Edit

      Disinfection uses liquid chemicals on surfaces and at room temperature to kill disease causing microorganisms. Ultraviolet light has also been used to disinfect the rooms of patients infected with Clostridium difficile after discharge. [11] Disinfection is less effective than sterilization because it does not kill bacterial endospores. [12]

      Sterilization Edit

      Sterilization is a process intended to kill all microorganisms and is the highest level of microbial kill that is possible. [ citação necessária ]

      Sterilization, if performed properly, is an effective way of preventing Infections from spreading. It should be used for the cleaning of medical instruments and any type of medical item that comes into contact with the blood stream and sterile tissues. [ citação necessária ]

      There are four main ways in which such items are usually sterilized: autoclave (by using high-pressure steam), dry heat (in an oven), by using chemical sterilants such as glutaraldehydes or formaldehyde solutions or by exposure to ionizing radiation. The first two are the most widely used methods of sterilization mainly because of their accessibility and availability. Steam sterilization is one of the most effective types of sterilizations, if done correctly which is often hard to achieve. Instruments that are used in health care facilities are usually sterilized with this method. The general rule in this case is that in order to perform an effective sterilization, the steam must get into contact with all the surfaces that are meant to be disinfected. On the other hand, dry heat sterilization, which is performed with the help of an oven, is also an accessible type of sterilization, although it can only be used to disinfect instruments that are made of metal or glass. The very high temperatures needed to perform sterilization in this way are able to melt the instruments that are not made of glass or metal.

      Effectiveness of the sterilizer, for example a steam autoclave is determined in three ways. [12] First, mechanical indicators and gauges on the machine itself indicate proper operation of the machine. Second heat sensitive indicators or tape on the sterilizing bags change color which indicate proper levels of heat or steam. And, third (most importantly) is biological testing in which a microorganism that is highly heat and chemical resistant (often the bacterial endospore) is selected as the standard challenge. If the process kills this microorganism, the sterilizer is considered to be effective. [12]

      Steam sterilization is done at a temperature of 121 C (250 F) with a pressure of 209 kPa (

      2atm). In these conditions, rubber items must be sterilized for 20 minutes, and wrapped items 134 C with pressure of 310 kPa for 7 minutes. The time is counted once the temperature that is needed has been reached. Steam sterilization requires four conditions in order to be efficient: adequate contact, sufficiently high temperature, correct time and sufficient moisture. [13] Sterilization using steam can also be done at a temperature of 132 C (270 F), at a double pressure.

      Dry heat sterilization is performed at 170 C (340 F) for one hour or two hours at a temperature of 160 C (320 F). Dry heat sterilization can also be performed at 121 C, for at least 16 hours. [14]

      Chemical sterilization, also referred to as cold sterilization, can be used to sterilize instruments that cannot normally be disinfected through the other two processes described above. The items sterilized with cold sterilization are usually those that can be damaged by regular sterilization. A variety of chemicals can be used including aldehydes, hydrogen peroxide, and peroxyacetic acid. Commonly, glutaraldehydes and formaldehyde are used in this process, but in different ways. When using the first type of disinfectant, the instruments are soaked in a 2–4% solution for at least 10 hours while a solution of 8% formaldehyde will sterilize the items in 24 hours or more. Chemical sterilization is generally more expensive than steam sterilization and therefore it is used for instruments that cannot be disinfected otherwise. After the instruments have been soaked in the chemical solutions, they must be rinsed with sterile water which will remove the residues from the disinfectants. This is the reason why needles and syringes are not sterilized in this way, as the residues left by the chemical solution that has been used to disinfect them cannot be washed off with water and they may interfere with the administered treatment. Although formaldehyde is less expensive than glutaraldehydes, it is also more irritating to the eyes, skin and respiratory tract and is classified as a potential carcinogen, [13] so it is used much less commonly.

      Ionizing radiation is typically used only for sterilizing items for which none of the above methods are practical, because of the risks involved in the process

      Personal protective equipment Edit

      Personal protective equipment (PPE) is specialized clothing or equipment worn by a worker for protection against a hazard. The hazard in a health care setting is exposure to blood, saliva, or other bodily fluids or aerosols that may carry infectious materials such as Hepatitis C, HIV, or other blood borne or bodily fluid pathogen. PPE prevents contact with a potentially infectious material by creating a physical barrier between the potential infectious material and the healthcare worker. [15]

      The United States Occupational Safety and Health Administration (OSHA) requires the use of personal protective equipment (PPE) by workers to guard against blood borne pathogens if there is a reasonably anticipated exposure to blood or other potentially infectious materials. [16]

      Components of PPE include gloves, gowns, bonnets, shoe covers, face shields, CPR masks, goggles, surgical masks, and respirators. How many components are used and how the components are used is often determined by regulations or the infection control protocol of the facility in question, which in turn are derived from knowledge of the mechanism of transmission of the pathogen(s) of concern. Many or most of these items are disposable to avoid carrying infectious materials from one patient to another patient and to avoid difficult or costly disinfection. In the US, OSHA requires the immediate removal and disinfection or disposal of a worker's PPE prior to leaving the work area where exposure to infectious material took place. [17] For health care professionals who may come into contact with highly infectious bodily fluids, using personal protective coverings on exposed body parts improves protection. [18] Breathable personal protective equipment improves user-satisfaction and may offer a similar level of protection. [18] In addition, adding tabs and other modifications to the protective equipment may reduce the risk of contamination during donning and doffing (putting on and taking off the equipment). [18] Implementing an evidence-based donning and doffing protocol such as a one-step glove and gown removal technique, giving oral instructions while donning and doffing, double gloving, and the use of glove disinfection may also improve protection for health care professionals. [18]

      The inappropriate use of PPE equipment such as gloves, has been linked to an increase in rates of the transmission of infection, [19] and the use of such must be compatible with the other particular hand hygiene agents used. [20] Research studies in the form of randomized controlled trials and simulation studies are needed to determine the most effective types of PPE for preventing the transmission of infectious diseases to healthcare workers. There is low quality evidence that supports making improvements or modifications to personal protective equipment in order to help decrease contamination. [18] Examples of modifications include adding tabs to masks or gloves to ease removal and designing protective gowns so that gloves are removed at the same time. In addition, there is weak evidence that the following PPE approaches or techniques may lead to reduced contamination and improved compliance with PPE protocols: Wearing double gloves, following specific doffing (removal) procedures such as those from the CDC, and providing people with spoken instructions while removing PPE. [18]

      Antimicrobial surfaces Edit

      Microorganisms are known to survive on non-antimicrobial inanimate 'touch' surfaces (e.g., bedrails, over-the-bed trays, call buttons, bathroom hardware, etc.) for extended periods of time. [21] [22] This can be especially troublesome in hospital environments where patients with immunodeficiencies are at enhanced risk for contracting nosocomial infections.

      Products made with antimicrobial copper alloy (brasses, bronzes, cupronickel, copper-nickel-zinc, and others) surfaces destroy a wide range of microorganisms in a short period of time. [23] The United States Environmental Protection Agency has approved the registration of 355 different antimicrobial copper alloys and one synthetic copper-infused hard surface that kill E. coli O157:H7, methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA), Estafilococo, Enterobacter aerogenes, e Pseudomonas aeruginosa in less than 2 hours of contact. Other investigations have demonstrated the efficacy of antimicrobial copper alloys to destroy Clostridium difficile, influenza A virus, adenovirus, and fungi. [23] As a public hygienic measure in addition to regular cleaning, antimicrobial copper alloys are being installed in healthcare facilities in the UK, Ireland, Japan, Korea, France, Denmark, and Brazil. The synthetic hard surface is being installed in the United States as well as in Israel. [24]

      Health care workers may be exposed to certain infections in the course of their work. Vaccines are available to provide some protection to workers in a healthcare setting. Depending on regulation, recommendation, the specific work function, or personal preference, healthcare workers or first responders may receive vaccinations for hepatitis B influenza measles, mumps and rubella Tetanus, diphtheria, pertussis N. meningitidis and varicella. [25]

      Surveillance is the act of infection investigation using the CDC definitions. Determining the presence of a hospital acquired infection requires an infection control practitioner (ICP) to review a patient's chart and see if the patient had the signs and symptom of an infection. Surveillance definitions exist for infections of the bloodstream, urinary tract, pneumonia, surgical sites and gastroenteritis.

      Surveillance traditionally involved significant manual data assessment and entry in order to assess preventative actions such as isolation of patients with an infectious disease. Increasingly, computerized software solutions are becoming available that assess incoming risk messages from microbiology and other online sources. By reducing the need for data entry, software can reduce the data workload of ICPs, freeing them to concentrate on clinical surveillance.

      As of 1998, approximately one third of healthcare acquired infections were preventable. [26] Surveillance and preventative activities are increasingly a priority for hospital staff. o Study on the Efficacy of Nosocomial Infection Control (SENIC) project by the U.S. CDC found in the 1970s that hospitals reduced their nosocomial infection rates by approximately 32 per cent by focusing on surveillance activities and prevention efforts. [27]

      In healthcare facilities, medical isolation refers to various physical measures taken to interrupt nosocomial spread of contagious diseases. Various forms of isolation exist, and are applied depending on the type of infection and agent involved, and its route of transmission, to address the likelihood of spread via airborne particles or droplets, by direct skin contact, or via contact with body fluids.

      In cases where infection is merely suspected, individuals may be quarantined until the incubation period has passed and the disease manifests itself or the person remains healthy. Groups may undergo quarantine, or in the case of communities, a cordon sanitaire may be imposed to prevent infection from spreading beyond the community, or in the case of protective sequestration, into a community. Public health authorities may implement other forms of social distancing, such as school closings, when needing to control an epidemic. [28]

      Barriers to the ability of healthcare workers to follow PPE and infection control guidelines include communication of the guidelines, workplace support (manager support), the culture of use at the workplace, adequate training, the amount of physical space in the facility, access to PPE, and healthcare worker motivation to provide good patient care. [29]

      Facilitators include the importance of including all the staff in a facility (healthcare workers and support staff) should be done when guidelines are implemented. [29]

      When an unusual cluster of illness is noted, infection control teams undertake an investigation to determine whether there is a true disease outbreak, a pseudo-outbreak (a result of contamination within the diagnostic testing process), or just random fluctuation in the frequency of illness. If a true outbreak is discovered, infection control practitioners try to determine what permitted the outbreak to occur, and to rearrange the conditions to prevent ongoing propagation of the infection. Often, breaches in good practice are responsible, although sometimes other factors (such as construction) may be the source of the problem. [ citação necessária ]

      Outbreaks investigations have more than a single purpose. These investigations are carried out in order to prevent additional cases in the current outbreak, prevent future outbreaks, learn about a new disease or learn something new about an old disease. Reassuring the public, minimizing the economic and social disruption as well as teaching epidemiology are some other obvious objectives of outbreak investigations. [30]

      According to the WHO, outbreak investigations are meant to detect what is causing the outbreak, how the pathogenic agent is transmitted, where it all started from, what is the carrier, what is the population at risk of getting infected and what are the risk factors. [ citação necessária ]

      Practitioners can come from several different educational streams. Many begin as nurses, some as medical technologists (particularly in clinical microbiology), and some as physicians (typically infectious disease specialists). Specialized training in infection control and health care epidemiology are offered by the professional organizations described below. Physicians who desire to become infection control practitioners often are trained in the context of an infectious disease fellowship. Training that is conducted "face to face", via a computer, or via video conferencing may help improve compliance and reduce errors when compared with "folder based" training (providing health care professionals with written information or instructions). [18]

      In the United States, Certification Board of Infection Control and Epidemiology is a private company that certifies infection control practitioners based on their educational background and professional experience, in conjunction with testing their knowledge base with standardized exams. The credential awarded is CIC, Certification in Infection Control and Epidemiology. It is recommended that one has 2 years of Infection Control experience before applying for the exam. Certification must be renewed every five years. [31]

      A course in hospital epidemiology (infection control in the hospital setting) is offered jointly each year by the Centers for Disease Control and Prevention (CDC) and the Society for Healthcare Epidemiology of America. [32]

      Austrália Editar

      In 2002, the Royal Australian College of General Practitioners published a revised standard for office-based infection control which covers the sections of managing immunisation, sterilisation and disease surveillance. [33] [34] However, the document on the personal hygiene of health workers is only limited to hand hygiene, waste and linen management, which may not be sufficient since some of the pathogens are air-born and could be spread through air flow. [35] [36]

      Since 1 November 2019, the Australian Commission on Safety and Quality in Health Care has managed the Hand Hygiene initiative in Australia, an initiative focused on improving hand hygiene practices to reduce the incidence of healthcare associated infections. [37]

      Estados Unidos Editar

      Currently, the federal regulation that describes infection control standards, as related to occupational exposure to potentially infectious blood and other materials, is found at 29 CFR Part 1910.1030 Bloodborne pathogens. [38]


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